Please wait a minute...

中国生物工程杂志

CHINA BIOTECHNOLOGY
中国生物工程杂志  2010, Vol. 30 Issue (06): 48-53    DOI: Q785 Q786
研究报告     
野生茄子黄萎病病程相关基因StDAHP的克隆与表达分析
王忠1,2,谢超1,决登伟1,黄乐平3,黄全生3,杨清1*
1.南京农业大学生命科学学院,作物遗传与种质创新国家重点实验室 南京 210095
2.江苏省中国科学院植物研究所,植物多样性与系统演化研究中心 南京 210014
3.新疆农作物生物技术重点开放实验室 乌鲁木齐 830091
Cloning and Expression Analysis of Verticillium wilt Pathogenesis-related Gene StDAHP in Solanum torvum
WANG Zhong1,2,XIE Chao1,JUE Deng-wei1,HUANG Le-ping3,HUANG Quan-sheng3,YANG Qing1
1.State Key Laboratory of Crop Genetics and Germplasm Enhancement, College of Life Sciences, Nanjing Agricultural University, Nanjing 210095, China
2.Research Center of Systematic and Evolutionary Botany, Institute of Botany, Jiangsu Province and Chinese Academy of Sciences,Nanjing 210014,China
3.Xinjiang Key Laboratory of Crop Biotechnology, Urmuqi 830091, China
 全文: PDF(1243 KB)   HTML
摘要:

采用RACE和同源序列克隆技术,从野生茄子托鲁巴姆(Solanum torvum)中克隆得到一个DAHP同源基因,命名为StDAHP基因,提交至GenBank,登录号为GU479467。生物信息学分析表明:StDAHP cDNA含有一个 1683 bp的开放阅读框,编码一个由 560 个氨基酸残基组成的蛋白,该蛋白分子量为 62.53 kDa,等电点为9.1。采用DNAMAN 软件对StDAHP和其他同源蛋白的氨基酸序列比对,结果表明:该蛋白与来自马铃薯、番茄、烟草和水稻4种植物的同源蛋白在氨基酸水平有较高的一致性;且在靠近N-末端和C-末端的氨基酸都比较保守。采用半定量 RT-PCR 方法对StDAHP mRNA 水平进行了分析,结果显示:StDAHP属于诱导表达,在病原菌侵染后期维持较高水平。

关键词: Solanum torvumStDAHP克隆表达分析    
Abstract:

A homologue of DAHP(3-deoxy-D-arabino-heptulosonate 7-phosphate synthase), designated StDAHP(GU479467), was isolated from Solanum torvum by homology cloning and RACE. Bioinformatics analysis showed that the full length of the cDNA contained an open reading frame of 1683 bp coding a protein of 560 amino acids, corresponding to a 62.53 kDa polypeptide with an isoelectric point of 9.1. Alignment of the amino acid sequence of StDAHP and that of other homologues showed that StDAHP had a high identity with DAHP from S. tuberosum, S. lycopersicum, N. tabacum, and O. sativa). StDAHP protein was more conservative near its N-terminal and C-terminal. Analysis of StDAHP mRNA level by semi-quantity RTPCR showed that its expression was induced by Verticillium dahliae infection.

Key words: Solanum torvum    StDAHP    Cloning    Expression analysis
收稿日期: 2010-02-22 出版日期: 2010-06-12
通讯作者: 杨清     E-mail: qyang19@njau.edu.cn
服务  
把本文推荐给朋友
加入引用管理器
E-mail Alert
RSS
作者相关文章  
王忠
谢超
决登伟
黄乐平
黄全生
杨清

引用本文:

王忠 谢超 决登伟 黄乐平 黄全生 杨清. 野生茄子黄萎病病程相关基因StDAHP的克隆与表达分析[J]. 中国生物工程杂志, 2010, 30(06): 48-53.

WANG Zhong, XIE Chao, JUE De-Wei, HUANG Le-Beng, HUANG Quan-Sheng, YANG Qing. Cloning and Expression Analysis of Verticillium wilt Pathogenesis-related Gene StDAHP in Solanum torvum. China Biotechnology, 2010, 30(06): 48-53.

链接本文:

https://manu60.magtech.com.cn/biotech/CN/Q785 Q786        https://manu60.magtech.com.cn/biotech/CN/Y2010/V30/I06/48

[1] 冯东昕, 李宝栋, 马宾生, 等. 嫁接对茄子黄萎病的抗性及某些生物学性状的影响. 中国蔬菜, 2000, (4): 1315. Feng D X, Li B D, Ma B S. et al. China Vegetables, 2000, (4): 1315. 
[2] 周宝利, 姜荷, 赵鑫. 不同砧木嫁接茄子抗黄萎病特性及其与根系分泌物关系. 沈阳农业大学学报, 2001, 32(6): 414417. Zhou B L, Jiang H, Zhao X. Journal of Shenyang Agricultural University, 2001, 32(6): 414417. 
[3] Kawchuk L M, Hachey J, Lynch D R. Development of sequence characterized DNA markets linked to a dominant Verticillium wilt resistance gene in tomato. Genome, 1988, 41: 9195. 
[4] Kawchuk L M, Lynch D R, Hachey J, et al. Identification of a codominant amplified polymorphic DNA marker linked to the Verticillium wilt resistance gene in tomato. Theoretical and Applied Genetics, 1994, 89: 661664. 
[5] Kawchuk L M, Hachey J, Lynch D R, et al. Tomato Ve disease resistance genes encode cell surfacelike receptors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2001, 98: 65116515. 
[6] 汪华, 崔志峰. 莽草酸生物合成途径的调控. 生物技术通报, 2009, 3:5053. Wang H, Cui Z F. Biotechnology Bulletin, 2009, 3:5053. 
[7] Kosuge T, Gilchrist D G. Aromatic amino acid biosynthesis and its regulation. Biochem Plants, 1980, 5:507531. 
[8] Dixon R. Natural products and plant disease resistance. Nature, 2001, 411(14): 843847. 
[9] 欧阳剑, 李家洋. 拟南芥色氨酸与吲哚乙酸生物合成的研究进展. 中国生物工程杂志, 1998, 18(2): 211. Ouyang J, Li J Y. China Biotechnology, 1998, 18(2): 211. 
[10] 徐晓梅, 杨署光. 苯丙氨酸解氨酶研究进展. 安徽农业科学, 2009, 37(31): 1511515119. Xu X M, Yang S G. Journal of Anhui Agricultral Science, 2009, 37(31): 1511515119. 
[11] Grlach J, Rasescke H R, Rentsch D, et al. Temporally distinct accumulation of transcripts encoding enzymes of the prechorismate pathway in elicitortreated, cultured tomato cells. Proc Natl Acad Sci USA, 1995, 92: 31663170. 
[12] Muday G K, Herrmann K M. Wounding induces one of two isoenzymes of 3deoxydarabinoheptulosonate 7phosphate synthase in Solanum tuberosum L. Plant Physiol, 1992, 98: 496500. 
[13] McCue K F, Conn E E. Induction of 3deoxyDarabinoheptulosonate 7phosphate synthase activity by fungal elicitor in cultures of Petroselinum crispum. Proc Natl Acad Sci USA, 1989, 86: 73747377.

[1] 陈修月,周文锋,何庆,苏冰,邹亚文. 噬菌体Qβ病毒样颗粒的制备、纯化及鉴定[J]. 中国生物工程杂志, 2021, 41(7): 42-49.
[2] 赵妍淑,张金华,宋浩. 工程原核生物和酵母菌中生产单克隆抗体和抗体片段研究进展 *[J]. 中国生物工程杂志, 2020, 40(8): 74-83.
[3] 贾晓,邱瑾,舒娟,李华,习书斌,曾溢滔,曾凡一. 血清孕酮水平检测在克隆胚胎移植受体牛的筛选及妊娠诊断中的应用 *[J]. 中国生物工程杂志, 2020, 40(7): 1-8.
[4] 王猛,宋慧茹,程雨洁,王毅,杨波,胡征. 以核糖体蛋白L7/L12为分子标志物精准检测肺炎链球菌的研究 *[J]. 中国生物工程杂志, 2020, 40(4): 34-41.
[5] 陈秋利,杨丽超,李辉,温莎,李刚,何敏. 人Nek2蛋白原核表达纯化及其多克隆抗体制备 *[J]. 中国生物工程杂志, 2020, 40(3): 31-37.
[6] 孔建涛,庄英萍,郭美锦. 基于DOE设计和氨基酸补加策略提高CHO细胞表达抗CD20单克隆抗体*[J]. 中国生物工程杂志, 2020, 40(12): 41-48.
[7] 吝建华,韩君,徐寒梅. PD-1/PD-L1免疫检查点抗体药物制剂稳定性开发[J]. 中国生物工程杂志, 2020, 40(10): 35-42.
[8] 袁晓英,王亚哲,石韦华,常艳,郝乐,贺玲玲,石红霞,黄晓军,刘艳荣. 流式检测PNH克隆的方法学探讨及临床筛检和意义 *[J]. 中国生物工程杂志, 2019, 39(9): 33-40.
[9] 江一帆,贾宇,王龙,王志明. 细胞培养过程对单克隆抗体糖基化修饰的影响和调控[J]. 中国生物工程杂志, 2019, 39(8): 95-103.
[10] 石俊松,罗绿花,周荣,麦然标,纪红美,余婉娴,吴珍芳,蔡更元. 延迟激活对猪克隆胚胎体外、体内发育效率的影响 *[J]. 中国生物工程杂志, 2019, 39(4): 16-23.
[11] 江一帆,董静,魏敬双. 工程细胞单克隆筛选及单克隆源性验证 *[J]. 中国生物工程杂志, 2019, 39(4): 101-105.
[12] 高倩,江洪,叶茂,郭文娟. 全球单克隆抗体药物研发现状及发展趋势 *[J]. 中国生物工程杂志, 2019, 39(3): 111-119.
[13] 刘国芳,刘晓志,高健,王志明. 宿主细胞残留蛋白质对单克隆抗体药物质量影响及其质量控制 *[J]. 中国生物工程杂志, 2019, 39(10): 105-110.
[14] 纪海姣,李文蕾,黄瑞晶,李剑,徐寒梅. 抗CD20抗体高产细胞株的筛选及质量评估[J]. 中国生物工程杂志, 2018, 38(8): 34-40.
[15] 徐婧雯,张雪梅,吴忠香,朱文兵,蒋曦,巩蔚,严丽蔚,宋杰,李慧,董少忠. 抗树鼩CD3ε单克隆抗体的制备及生物学特性鉴定[J]. 中国生物工程杂志, 2018, 38(4): 54-62.