ISSN 1671-8135 CN 11-4816/Q
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图2
干细胞治疗肝衰竭的机制
表2 肝衰竭治疗方法及局限性
图1
肝衰竭发病机制
表1 肝衰竭分类及特点
表2 细菌治疗肿瘤的临床试验
表1 细菌作为药物载体的工程化和肿瘤联合治疗策略
图1
细菌及其衍生物在肿瘤联合治疗中的优化策略
图4
新型纳米抗体ICIs与DC融合疫苗联合治疗(本图由Figdraw绘制)
图3
DC疫苗的联合疗法(本图由Figdraw绘制)
图2
DC疫苗的抗肿瘤机制(本图由Figdraw绘制)
图1
传统DC疫苗的制备方法(本图由Figdraw绘制)
表3 作为诊断/预后标志物的外泌体非编码RNAs
[
74
⇓
-
76
]
表2 不同体液类型中外泌体分离总结
[
57
]
图2
外泌体分离常规技术示意图(根据参考文献[
18
]修改,由Figdraw平台绘制)
A:超速离心。通过多次离心得到外泌体,离心力从 300
g
到 100 000
g
,在每个离心步骤之后,去除细胞和细胞碎片,并收集上清液进行后续离心,离心在4℃下进行 B:密度梯度离心。通过从下到上逐渐降低密度层来制备等比密度梯度超速离心,长时间离心后,包括外泌体和其他细胞外组分在与每种组分密度相似的培养基中达到静止位置 C:尺寸排阻色谱法。当溶液通过由多孔树脂颗粒组成的固定相时,分子可以根据大小分离 D:免疫亲和层析。将含外泌体的液体与外泌体特异性抗体偶联的固体基质一起孵育后,可以将外泌体富集到固体基质上
表1 常用外泌体分离方法的比较及其优缺点
[
18
⇓
-
20
]
图1
外泌体发生示意图(由Figdraw平台绘制)
外泌体属于微囊泡体,它们通过质膜向内出芽进入早期内体,随后经过迁移和分选产生多囊泡体(MVB),并形成腔内囊泡(ILVs),当由此产生的多囊泡体(MVB)与质膜融合时,这些囊泡以外泌体的形式释放
图17
AC009005.1对HepG2细胞迁移、侵袭和增殖的影响
A:Transwell实验检测肝癌侵袭和迁移。具有代表性的实验结果如图所示 B:细胞划痕后0、48 h记录图像。具有代表性的实验结果如图所示 C:敲低AC009005.1后肝癌细胞集落数量减少 D:通过iCELLigence检测到敲低AC009005.1后肝癌细胞增殖能力下降
图16
AC009005.1对HepG2细胞转染AC009005.1或阴性对照siRNA后的细胞周期变化
图15
AC009005.1对HepG2细胞转染AC009005.1或阴性对照siRNA后的ROS水平变化
图14
转染AC009005.1后相关mRNA在HCC中的表达水平
A:转染AC009005.1或阴性对照siRNA后验证转染效率 B:转染AC009005.1或阴性对照siRNA后AC009005.1相关mRNA的表达水平
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